Терапия болезни Альцгеймера на основе стволовых клеток

Обзор

УДК 616.894-053.8:615.3
DOI: 10.57034/2618723X-2024-01-06

Е.В. Белоусова1,2*,
соискатель, лаборант-исследователь,
https://orcid.org/0000-0003-2511-5173
Д.И. Салихова1,2,
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник,
https://orcid.org/0000-0001-7842-7635
В.О. Небогатиков3,
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник,
https://orcid.org/0000-0002-2454-9255
А.А. Устюгов3,
доктор биологических наук, директор ИФАВ РАН,
https://orcid.org/0000-0003-1977-4797
Д.В. Гольдштейн1,2,
доктор биологических наук, заведующий лабораторией,
https://orcid.org/0000-0003-2438-1605

1 НИИ молекулярной и клеточной медицины медицинского института РУДН,
117198, Россия, Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 6.
2 ФГБНУ «Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова»,
115522, Россия, ул. Москворечье, д. 1, Москва.
3 Институт физиологически активных веществ Федерального исследовательского центра проблем химической физики и медицинской химии РАН,
142432, Россия, Московская область, г. Черноголовка, Северный проезд, д. 1.

*E-mail: [email protected]


Ключевые слова: болезнь Альцгеймера β-амилоид стволовые клетки нейропротекция

Благодарности

Работа выполнена при поддержке гранта Российского научного фонда (проект № 23-15-00362).


Для цитирования:

Белоусова Е.В., Салихова Д.И., Небогатиков В.О., Устюгов А.А., Гольдштейн Д.В. Терапия болезни Альцгеймера на основе стволовых клеток. Лабораторные животные для научных исследований. 2024; 1. https://doi.org/10.57034/2618723X-2024-01-06

Резюме

Болезнь Альцгеймера — нейродегенеративное заболевание, характеризующееся внеклеточным накоплением β-амилоида и внутриклеточной агрегацией гиперфосфорилированного тау-белка в нейрофибриллярные клубки в головном мозге. Оно приводит к прогрессирующему ухудшению памяти и потере повседневных навыков. В настоящее время не существует эффективного лечения этого заболевания, однако активно изучается потенциал стволовых клеток для терапии нейродегенеративных патологий, в том числе болезни Альцгеймера. Секретируемые стволовыми клетками факторы роста, внеклеточные везикулы позволяют ослабить нейровоспаление и замедлить ухудшение когнитивных функций при развитии заболевания. В данном обзоре освещается прогресс в доклинических исследованиях с использованием мышиных моделей разных типов стволовых клеток как стратегий лечения болезни Альцгеймера, и приводятся сведения об их трансляционных приложениях. В статье рассмотрены преимущества, терапевтические эффекты и перспективы применения стволовых клеток и их дифференцирующихся потомков, а также приведена современная информация о механизмах включения различных видов стволовых и плюрипотентных клеток в эндогенный нейрогенез при болезни Альцгеймера. Данные, представленные в обзоре, содержат информацию о методах клеточной терапии как уже примененных в клинической практике, так и изучаемых на различных моделях, в том числе трансгенных мышах. В будущем предстоит разработка эффективных методик получения и доставки стволовых клеток и их продуктов для достижения значимых клинических результатов у пациентов с болезнью Альцгеймера.

Введение

Обучение и память — сложные когнитивные процессы, в которых принимает участие гиппокамп, и на которые серьезно влияют старение и некоторые нейродегенеративные расстройства, такие как болезнь Альцгеймера (БА). Это заболевание вызывает дегенеративное поражение головного мозга, ухудшающее память и приводящее к неспособности выполнять основные повседневные задачи [1]. БА является наиболее распространенной возрастной формой деменции и клинически характеризуется прогрессирующей потерей холинергических нейронов и синапсов, отложением нейротоксических белков, таких как внеклеточные бляшки β-⁠амилоида (Aβ) и внутриклеточные нейрофибриллярные клубки [2]. К настоящему моменту многие подходы к терапии БА не показали удовлетворительных результатов в улучшении когнитивных функций [3]. Сложность лечения данного заболевания состоит в недостаточной изученности патогенеза и в необходимости долгосрочной терапии [4].

Одним из недостатков лекарственной терапии является отсутствие стимуляции регенерации поврежденных нейронов, при этом сниженная жизнеспособность клеток тормозит транспортировку лекарств [5]. Сигнальные механизмы действия нейротрофических факторов в головном мозге, несмотря на их важность в поддержании синаптической пластичности в памяти и обучении, еще до конца не выяснены [6]. Инсулинотерапия в качестве безопасного и краткосрочного симптоматического вмешательства для отсрочки потери когнитивных функций не всегда достигает значимых клинических результатов [7]. Низкоинтенсивная лазерная терапия имеет потенциал к предотвращению когнитивных нарушений, изменяя функцию клеток головного мозга и нейрометаболические пути, но пока параметры для индивидуального лечения не определены. Продолжительность эффектов и вероятность хронического повторения также неясны [8]. Фокус на митохондриальном дыхании может быть эффективным в терапии БА в связи с изменениями потока митохондриального кальция на ранних стадиях заболевания, однако пока недостаточно изучены причины данного явления [9]. Умеренная физическая активность и соответствующая диета также имеют связь со снижением риска нейродегенерации, но они не так эффективны при лечении БА [10].

Все больше данных подтверждает терапевтический потенциал регенеративной медицины для лечения нейродегенеративных заболеваний. Терапия стволовыми клетками имеет преимущества перед другими подходами: она повышает уровень функционального восстановления центральной нервной системы (ЦНС) головного мозга [11]. Регенерация нервной ткани может быть осуществлена путем экзогенного введения стволовых клеток, которые способны после дифференцировки заместить поврежденные ткани головного мозга [12]. Терапия стволовыми клетками способна уменьшить нейровоспаление, поскольку оно играет роль в повреждении головного мозга, которое приводит к снижению когнитивных функций [13]. Терапия стволовыми клетками также может устранять нейрофибриллярные клубки и аномальную деградацию белков, способствовать митохондриальному транспорту для улучшения когнитивных функций [14].

Методы

Представленный обзор обобщает научные публикации результатов доклинических исследований применения стволовых клеток для терапии БА. Поиск публикаций выполняли в базах данных PubMed и Google Scholar. В обзор включали публикации, доступные для поиска на 20.09.2023 г. Для реализации поставленной задачи была разработана стратегия поиска информации на основе ключевых слов. Ключевые слова и словосочетания были определены на английском языке: stem cell therapy, glial progenitor cells, Alzheimer’s disease, β-⁠amyloid, neurodegeneration, animal models, mouse models, 5xFAD.

Стволовые клетки в терапии болезни Альцгеймера

Для терапии БА в настоящее время применяются следующие типы стволовых клеток: нейральные (НСК), мезенхимальные (МСК), эмбриональные (ЭСК), индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (иПСК) [15]. Большинство эффективных методов лечения БА сосредоточено на воздействии на патологию заболевания на ранней стадии для сохранения цереброваскулярной функции.

Нейральные стволовые клетки

Поскольку НСК вносят значительный вклад в гомеостаз и репарацию головного мозга, они проявляют свойства для лечения БА на ранних стадиях [16]. В 2018 г. L. McGinley и соавт. [17] обнаружили, что трансплантация НСК человека усиливала когнитивные способности в мышиной модели APP/⁠PS1 (мыши с мутацией белка-⁠предшественника амилоида и пресенилина 1). Трансплантация была произведена в область свода бахромки и значительно улучшила когнитивные функции в тестах, оценивающих память, через 4 и 16 нед. Кроме того, Y. Hayashi и соавт. [18] трансплантировали ксеногенные и аутологичные НСК мышам с БА. Оба типа клеток дали положительные результаты лечения. Более поздние исследования были посвящены клеточным механизмам действия НСК и их терапевтической патологии при БА. В 2021 г. L. Apodaca и соавт. [19] обнаружили, что внеклеточные везикулы, полученные из НСК человека, могут снижать признаки заболевания. Они вводили 2–6-⁠месячным мышам 5xFAD внеклеточные везикулы. Лечение значительно уменьшало накопление плотных амилоидных β-⁠бляшек в обеих возрастных группах, что продемонстрировало нейропротекторный эффект для коррекции нейропатологий БА. В 2022 г. M. Reveulta и соавт. [20] изучали опосредованное микроглией воспаление и дифференцировку НСК при БА, а также возможный терапевтический эффект блокады K(V)1.3-⁠канала. Они пришли к выводу, что блокаторы K(V)1.3 препятствуют опосредованной микроглией нейротоксичности в культуре, уменьшая проявление и образование провоспалительных цитокинов через пути NF-⁠kB и p38MAPK. В целом, терапия НСК показала большую эффективность в лечении БА на ранней стадии.

Глиальные клетки-⁠предшественники

Другой возможной стратегией для терапии БА является трансплантация стволовых клеток, дифференцированных в глиальном направлении, — глиальных клеток-⁠предшественников (ГКП). Астроциты необходимы для правильной регуляции ЦНС. Важно отметить, что эти клетки обладают высокой секреторностью по своей природе. Действительно, они могут высвобождать молекулы, которые играют ключевую физиологическую роль в нервных тканях, и чья аномальная регуляция связана с некоторыми расстройствами ЦНС. Более глубокий анализ секретома астроцитов может расширить текущие познания о полном потенциале этих клеток и их секретируемых молекул не только как активных участников патофизиологических событий, но и как фармакологических мишеней или даже как терапевтических средств для лечения неврологических заболеваний. Секретируемые астроцитами молекулы принимают участие в процессах, имеющих патофизиологическое значение для астроглиальной популяции: 1) регуляция НСК и их потомства во взрослых нейрогенных нишах; 2) модуляция целостности и функции гематоэнцефалического барьера. Астроциты поддерживают нейроны как структурно, так и функционально, обеспечивая питательными веществами и нейротрофическими факторами, удаляя нейротрансмиттеры и метаболиты отходов, чтобы обеспечить гомеостатическую среду [21]. Полагают, что астроциты могут также высвобождать глиотрансмиттеры для модуляции синаптической передачи [22, 23]. Кроме того, после травмы головного мозга астроциты участвуют в нейровоспалительных реакциях в попытках восстановления и/⁠или ремоделирования.

Мезенхимальные стволовые клетки

МСК являются наиболее изученным типом клеток в терапии БА стволовыми клетками из-⁠за их доступности и широкого потенциала к дифференцировке. Их можно вводить внутривенно для преодоления гематоэнцефалического барьера при низком иммунном ответе. В частности, внеклеточные везикулы, полученные из МСК, способны обладать свойствами донора с минимальной иммуногенностью. Они также имеют небольшой риск формирования опухолей после терапии [24]. В 2019 г. Е. Reza-⁠Zaldivar и соавт. [25] обнаружили, что внеклеточные везикулы из МСК могут повышать пластичность нейронов и усиливать когнитивные функции. Они инъецировали агрегаты β1–42-⁠амилоида в зубчатую извилину мышей билатерально и проводили тест распознавания новых объектов на 14-⁠й и 28-⁠й день после введения везикул. Результаты показали, что везикулы стимулируют нейрогенез в субвентрикулярной зоне. В 2020 г. М. Nakano и соавт. [26] обнаружили, что МСК, происходящие из костного мозга (КМ-⁠МСК), могут усиливать когнитивные функции в модели БА за счет усиления экспрессии микроРНК-⁠146a в гиппокампе. КМ-⁠МСК инъецировали интрацеребровентрикулярно в сосудистое сплетение в боковом желудочке, где они секретировали экзосомы в спинно-⁠мозговую жидкость. Эксперименты in vitro показали, что экзосомальная микроРНК-⁠146a из МСК поглощалась астроцитами, и уровень микроРНК-⁠146a повышался. В том же году Н. Wei и соавт. [27] исследовали, регулирует ли экзосомальная микроРНК-⁠223, полученная из МСК, апоптоз нейрональных клеток. Она нацеливается на PTEN, таким образом активируя путь PI3K/⁠Akt для ингибирования апоптоза нейронов, и, следовательно, становится потенциальным средством лечения БА.

Исследования на клиническом уровне также значительно прогрессировали в последнее время, однако они основаны преимущественно на терапии с помощью МСК. В 2021 г. Н. Kim и соавт. [28] выполнили интрацеребровентрикулярную инъекцию МСК пуповинной крови человека пациентам с БА в I фазе клинического исследования. Они отобрали 9 пациентов с легкой и средней степенью тяжести заболевания и вводили им низкие и высокие дозы МСК соответственно. Все побочные явления прекратились в течение 36 ч, и симптомы БА были смягчены. В целом, терапия МСК уменьшает нейровоспаление за счет устранения β-⁠амилоида, нейрофибриллярных клубков и аномальной деградации белков. Терапия МСК способствует восстановлению гематоэнцефалического барьера и аутофагии, регулирует уровень ацетилхолина и улучшает когнитивные функции головного мозга [14].

Эмбриональные стволовые клетки

Поскольку существуют этические и иммуногенные ограничения на использование ЭСК для лечения [29], клиническое применение терапии на основе ЭСК может оказаться бесперспективным, однако проводятся доклинические исследования ЭСК на животных моделях. В 2020 г. D. Kim и соавт. [29] исследовали эффективность и осуществимость внутриартериального введения ЭСК в животной модели БА. ЭСК трансплантировали в модели грызунов с БА, что приводило к генерации холинергических нейронов, усилению формирования синапсов и улучшению памяти [30–32]. Кроме того, сообщалось, что нейросферы, полученные из ЭСК мыши, генерировали холинергические нейроны в коре головного мозга у мышей, несущих повреждения базального ядра, что улучшило рабочую память мышей [33]. Было обнаружено, что предшественники двигательных нейронов, полученные из ЭСК мыши, обработанных SHH и RA, дифференцируются в двигательные нейроны после их трансплантации в базальные отделы переднего мозга, что улучшает когнитивную функцию пораженных участков мозга крысы [32]. ЭСК мыши и человека также были дифференцированы в предшественники базальных переднемозговых холинергических нейронов (БПХН) и трансплантированы в передний мозг мышей с БА. Через 2 мес после инъекции трансплантированные предшественники преимущественно дифференцировались в зрелые холинергические нейроны. Терапия предшественниками нейронов позволила облегчить когнитивный дефицит у двух линий мышей с БА (5XFAD и APP/⁠PS1) в течение 6 мес после трансплантации [34]. ЭСК человека также дали начало нейральным клеткам-⁠предшественникам медиального ганглионарного возвышения при обработке SHH. Трансплантированные клетки дифференцировались в базальные холинергические нейроны переднего мозга (БПХН) и ГАМК-⁠интернейроны, нивелируя дефицит обучения и памяти у мышей с поврежденной медиальной перегородкой [35].

Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки

Появление технологии, при которой соматические клетки репрограммируются в плюрипотентные стволовые клетки, позволяет создать оптимальную модель, сохраняющую генетическую идентичность донора, предлагая альтернативу в отношении регенеративной терапии. При этом иПСК могут неограниченно самообновляться in vitro и дифференцироваться в различные типы клеток, что дает перспективы для моделирования и лечения БА у конкретных пациентов [36]. На генетическом и клеточном уровне было проведено множество исследований терапии с иПСК при БА. В 2020 г. R. Butler и соавт. [37] обнаружили генетическую значимость микроглии, полученной из иПСК человека, для БА. Используя экспрессию генов, характерную для данного типа клеток, было показано, что клетки микроглии, полученные из иПСК, генетически связаны с БА. В 2020 г. L. Zhang и соавт. [38] обнаружили, что нервные клетки человека, полученные из иПСК от пациентов с БА, проявляли различную восприимчивость к окислительному стрессу. Реакция нервных клеток на окислительный стресс является важным механизмом когнитивной дисфункции и старения. Под воздействием пероксида водорода жизнеспособность и длина нейритов нейронов человека значительно снижались. Из-⁠за окислительных свойств нейронов существует потенциал для лечения БА, направленный на их деоксидизацию.

На сегодняшний день иПСК являются перспективным инструментом для регенеративной медицины благодаря отсутствию использования эмбрионального материала [39, 40] и возможности получения различных клеточных фенотипов на разных стадиях дифференцировки in vitro. Во многих исследованиях in vivo с использованием модельных животных нейральные предшественники, полученные из иПСК, показали улучшение когнитивных функций и памяти. Так, стереотаксическое введение аутологичных нейральных предшественников, полученных из иПСК, в гиппокамп мышей улучшало синаптическую пластичность и уменьшало агрегаты β-⁠амилоида [41]. В другом исследовании нейрональные предшественники холинергического фенотипа, полученные из иПСК, трансплантировали в гиппокамп трансгенным животным в модели деменции PDAPP (управляемый промотором PDGF белок-⁠предшественник амилоида) [42]. Было обнаружено, что через 45 дней после трансплантации клетки выживают и дифференцируются в холинергические и ГАМКергические нейроны в мозге хозяина, что приводит к улучшению пространственной памяти [43]. Было изучено терапевтическое действие производных иПСК макрофагоподобных клеток (иПСК-⁠МК) со сверхсекрецией белка неприлизина-⁠2 (NEP2), являющегося протеазой с Aβ-⁠деградирующей активностью, иПСК-⁠МК/⁠NEP2 вводили в гиппокамп трансгенным животным 5XFAD [44, 45]. Хотя влияние на когнитивную функцию и повреждение нейронов не изучали, в мозге мышей наблюдали значительное снижение уровня Aβ. Снижение Aβ не было значительным при трансплантации немодифицированных иПСК-⁠МК, демонстрируя, что секреция NEP2, а не фагоцитоз, вызывала элиминацию Aβ. Это исследование предполагает потенциальное терапевтическое преимущество иПСК-⁠МК, секретирующих NEP2, для лечения БА. Были исследованы нейральные предшественники, полученные из иПСК и предварительно обработанные ретиноевой кислотой, белками SHH и Noggin, которые, как показало исследование, дифференцировались в холинергические и ГАМКергические нейроны после трансплантации в гиппокамп животным с БА и способствовали восстановлению пространственной памяти [43].

Механизмы терапевтического эффекта стволовых клеток при болезни Альцгеймера

Терапевтический потенциал стволовых клеток был оценен в различных областях мозга животных с БА: гиппокампе и базальных отделах переднего мозга (табл. 1). Однако механизмы такой терапии остаются малоизученными по сегодняшний день, хотя существуют различные гипотезы, такие как клеточная нейропротекция, ведущая к увеличению плотности синапсов гиппокампа и улучшению зависимых от гиппокампа когнитивных функций [30]. Интересно, что BDNF-⁠опосредованное восстановление когнитивных функций не изменяет патологию Aβ или белка тау в мозге при БА, указывая на действие BDNF (нейротрофический фактор мозга) через амилоиднезависимый механизм [30]. Соответственно предшественники БПХН корректировали когнитивный дефицит у мышей с БА без изменения общего уровня агрегатов β-⁠амилоида, при этом было продемонстрировано, что терапевтическое действие частично связано с секрецией BDNF [46, 47]. Нейропротекторные эффекты трансплантированных НСК, заключающиеся в предотвращении дегенерации или атрофии нейронов и потере синапсов, были аналогичны эффектам, полученным при непосредственном введении BDNF в мозг трансгенных мышей с БА [48, 49]. Кроме того, трансплантированные предшественники БПХН секретировали ацетилхолин и продуцировали ацетилхолинэстеразу в базальных отделах переднего мозга мышей с БА, что было необходимо для восстановления когнитивных функций [34]. Эти данные указывают, что нейроны, происходящие из НСК, обладают сходными функциями с их аналогами in vivo в отношении метаболизма ацетилхолина в мозге при БА [34]. Таким образом, нейропротекторные свойства трансплантированных НСК или предшественников нейронов, по-⁠видимому, в значительной степени достигаются за счет секреции нейротрофинов или нейротрансмиттеров, которые могут способствовать восстановлению повреждений головного мозга и коррекции когнитивных нарушений у пациентов с БА.

Заместительная терапия стволовыми клетками и их функционирование

Структурная целостность и правильная синаптическая активность необходимы для нормальной функции мозга. При дальнейшем исследовании трансплантированных НСК и производ­ных нейронов стало ясно, что трансплантированные НСК могут функционально замещать дегенерированные нейроны в дополнение к их нейропротекторному действию на мозг при БА, демонстрируя терминальную дифференцировку в нейроны и долгосрочную выживаемость. Это подтверждает, что трансплантаты НСК хорошо переносят условия патологической среды головного мозга при БА [34, 35, 43, 50]. Кроме того, было обнаружено, что дифференцированные клетки-⁠предшественники запускают потенциал действия и спонтанные постсинаптические токи у мышей с поврежденными холинергическими нейронами переднего мозга и ГАМК-⁠нейронами. При этом нейроны, происходящие из НСК человека, обладают мембранными свойствами, типичными для зрелых нейронов [35]. Недавно несколько исследований [34, 47] систематически охарактеризовали нейроны, полученные из НСК, с точки зрения их выживания, пролиферации, дифференцировки, миграции, проекции и интеграции у мышей с БА, тем самым оценив потенциал НСК для замены утраченных нейронов и дегенерированных синапсов. Подтверждено, что трансплантированные предшественники БПХН дают начало зрелым нейронам, которые демонстрируют паттерны миграции, типичные для нативных нейронов в базальном ядре мышей с БА [34]. Были обнаружены сложные дендритные ветви и длинные аксоны, возникающие из трансплантированных БПХН, а синаптические структуры, обычно возникающие между экзогенными и эндогенными нейронами, регистрировались с помощью электронной микроскопии [34]. Кроме того, обнаружено, что большинство трансплантированных БПХН проявляют возбуждающую и тормозную синаптическую активность, указывая на их возможность функционально интегрироваться в холинергическую систему в базальных отделах переднего мозга мышей с БА [34]. Также было показано, что НСК человека дифференцировались в глутаматергические нейроны через месяц после трансплантации в гиппокамп мышей с БА [47]. Глутаматергические нейрональные трансплантаты демонстрировали долгосрочную (до 12 мес) выживаемость без сверхактивации микроглии [47]. Оптогенетический анализ подтвердил, что экзогенные нейроны образуют синаптические связи трансплантат—хозяин с эндогенными нейронами гиппокампа и проявляют соответствующую постсинаптическую активность. Кроме того, повышенная синаптическая передача усиливала локальные нейронные сети мозга при БА, увеличивая уровень долговременной потенциации, повышая пластичность гиппокампа и смягчая когнитивный дефицит [47]. Эти наблюдения убедительно свидетельствуют, что НСК человека могут функционально интегрироваться в нервную ткань, заменять поврежденные нейроны и усиливать пластичность головного мозга при БА.

Заключение

Несмотря на достижения клеточной терапии, клинические разработки заместительной терапевтической стратегии на основе стволовых клеток человека для лечения болезни Альцгеймера пока недостаточны. С этой целью необходимо получить соответствующие стволовые клетки человека, подходящие для трансплантации, разработать эффективные стратегии трансплантации и модели животных с болезнью Альцгеймера для оценки терапевтических эффектов трансплантированных стволовых клеток.

Сведения о конфликте интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Вклад авторов

Е.В. Белоусова — анализ данных литературы, написание и редактирование текста статьи.
Д.И. Салихова, В.О. Небогатиков — редактирование текста статьи, утверждение окончательного варианта для публикации.
А.А. Устюгов — существенный вклад в концепцию работы, согласие нести ответственность за все аспекты работы.
Д.В. Гольдштейн — существенный вклад в концепцию работы.

Список источников

  1. Bagheri-Mohammadi S. Stem cell-based therapy as a promising approach in Alzheimer’s disease: Current perspectives on novel treatment // Cell Tissue Bank. 2021. Vol. 22. N. 3. P. 339–353. DOI: 10.1007/s10561-020-09896-3.
  2. Ho J.K., Nation D.A. Alzheimer’s Disease Neuroimaging Initiative. Neuropsychological Profiles and Trajectories in Preclinical Alzheimer’s Disease // J. Int. Neuropsychol Soc. 2018. Vol. 24. N. 7. P. 693–702. DOI: 10.1017/S135561771800022X.
  3. Bali P., Lahiri D.K., Banik A., Nehru B., Anand A. Potential for Stem Cells Therapy in Alzheimer’s Disease: Do Neurotrophic Factors Play Critical Role? // Curr. Alzheimer Res. 2017. Vol. 14. N. 2. P. 208–220. DOI: 10.2174/1567205013666160314145347.
  4. Agatonovic-Kustrin S., Kettle C., Morton D.W. A molecu­lar approach in drug development for Alzheimer’s dise­ase // Biomed. Pharmacother. 2018. Vol. 106. P. 553–565. DOI: 10.1016/j.biopha.2018.06.147.
  5. Kabir M.T., Uddin M.S., Mamun A.A. et al. Combination drug therapy for the management of Alzheimer’s disease // Int. J. Mol. Sci. 2020. Vol. 21. N. 9. P. 3272. DOI: 10.3390/ijms21093272.
  6. Gao L., Zhang Y., Sterling K., Song W. Brain-derived neurotrophic factor in Alzheimer’s disease and its pharmaceutical potential // Transl. Neurodegener. 2022. Vol. 11. N. 1. P. 4. DOI: 10.1186/s40035-022-00279-0.
  7. Craft S., Raman R., Chow T.W. et al. Safety, Efficacy, and Feasibility of Intranasal Insulin for the Treatment of Mild Cognitive Impairment and Alzheimer Disease Dementia: A Randomized Clinical Trial // JAMA Neurol. 2020. Vol. 77. N. 9. P. 1099–1109. DOI: 10.1001/jamaneurol.2020.1840.
  8. De la Torre J.C. Treating cognitive impairment with transcranial low level laser therapy // J. Photochem. Photobiol. 2017. Vol. 168. P. 149–155. DOI: 10.1016/j.jphotobiol.2017.02.008.
  9. Wu A.J., Tong B.C., Huang A.S., Li M., Cheung K.H. Mitochondrial Calcium Signaling as a Therapeutic Target for Alzheimer’s Disease // Curr. Alzheimer. Res. 2020. Vol. 17. N. 4. P. 329–343. DOI: 10.2174/1567205016666191210091302.
  10. Dhana K., Evans D.A., Rajan K.B., Bennett D.A., Morris M.C. Healthy lifestyle and the risk of Alzheimer dementia: Findings from 2 longitudinal stu­dies // Neurology. 2020. Vol. 95. N. 4. P. e374–e383. DOI: 10.1212/WNL.0000000000009816.
  11. Chakari-Khiavi F., Dolati S., Chakari-Khiavi A. et. al. Prospects for the application of mesenchymal stem cells in Alzheimer’s disease treatment // Life Sci. 2019. Vol. 231. P. 116564. DOI: 10.1016/j.lfs.2019.116564.
  12. Duncan T., Valenzuela M. Alzheimer’s disease, dementia, and stem cell therapy // Stem Cell Res Ther. 2017. Vol. 8. N. 1. P. 111. DOI: 10.1186/s13287-017-0567-5.
  13. Lucke-Wold B.P., Logsdon A.F., Manoranjan B. et al. Aneurysmal Subarachnoid Hemorrhage and Neuroinflammation: A Comprehensive Review // Int. J. Mol. Sci. 2016. Vol. 17. N. 4. P. 497. DOI: 10.3390/ijms17040497.
  14. Kim J., Lee Y., Lee S. et al. Mesenchymal Stem Cell The­rapy and Alzheimer’s Disease: Current Status and Future Perspectives // J. Alzheimer’s Dis. 2020. Vol. 77. N. 1. P. 1–14. DOI: 10.3233/JAD-200219.
  15. Hosseini S.A., Mohammadi R., Noruzi S. et al. Stem cell- and gene-based therapies as potential candidates in Alzheimer’s therapy // J. Cell Biochem. 2018. Vol. 119. N. 11. P. 8723–8736. DOI: 10.1002/jcb.27202.
  16. Boese A.C., Hamblin M.H., Lee J.P. Neural stem cell the­rapy for neurovascular injury in Alzheimer’s disease // Exp. Neurol. 2020. Vol. 324. P. 113112. DOI: 10.1016/j.expneurol.2019.113112.
  17. McGinley L. M., Kashlan O.N., Bruno E.S. et al. Human neural stem cell transplantation improves cognition in a murine model of Alzheimer’s disease // Sci. Rep. 2018. Vol. 8. N. 1. P. 14776. DOI: 10.1038/s41598-018-33017-6.
  18. Hayashi Y., Lin H.T., Lee C.C., Tsai K.J. Effects of neural stem cell transplantation in Alzheimer’s disease models // J. Biomed. Sci. 2020. Vol. 27. N. 1. P. 29. DOI: 10.1186/s12929-020-0622-x.
  19. Apodaca L.A., Baddour A.A. D., Garcia C.Jr. et al. Human neural stem cell-derived extracellular vesicles mitigate hallmarks of Alzheimer’s disease // Alzheimer’s Res. Ther. 2021. Vol. 13. N. 1. P. 57. DOI: 10.1186/s13195-021-00791-x.
  20. Revuelta M., Urrutia J., Villarroel A., Casis O. Microglia-Mediated Inflammation and Neural Stem Cell Differentiation in Alzheimer’s Disease: Possible Therapeutic Role of K(V)1.3 Channel Blockade // Front. Cell. Neurosci. 2022. Vol. 16. P. 868842. DOI: 10.3389/fncel.2022.868842.
  21. Perez-Alvarez A., Araque A. Astrocyte-neuron interaction at tripartite synapses // Current drug targets. 2013. Vol. 14. N. 11. P. 1220–1224. DOI: 10.2174/13894501113149990203.
  22. Araque A., Carmignoto G., Haydon P. G. et al. Gliotransmitters travel in time and space // Neuron. 2014. Vol. 81. N. 4. P. 728–739. DOI: 10.1016/j.neuron.2014.02.007.
  23. Fiacco T.A., McCarthy K.D. Multiple lines of evidence indicate that gliotransmission does not occur under physiological conditions // J. Neuroscience. 2018. Vol. 38. N. 1. P. 3–13. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.0016-17.2017.
  24. Guo M., Yin Z., Chen F., Lei P. Mesenchymal stem cell-derived exosome: A promising alternative in the therapy of Alzheimer’s disease // Alzheimer’s Res. Ther. 2020. Vol. 12. N. 1. P. 109. DOI: 10.1186/s13195-020-00670-x.
  25. Reza-Zaldivar E.E., Hernández-Sapiéns M.A., Gutiérrez-Mercado Y.K. et al. Mesenchymal stem cell-derived exosomes promote neurogenesis and cognitive function recovery in a mouse model of Alzheimer’s disease // Neural Regen. Res. 2019. Vol. 14. N. 9. P. 1626–1634. DOI: 10.4103/1673-5374.255978.
  26. Nakano M., Kubota K., Kobayashi E. et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells improve cognitive impairment in an Alzheimer’s disease model by increasing the expression of microRNA-146a in hippocampus // Sci. Rep. 2020. Vol. 10. N. 1. P. 10772. DOI: 10.1038/s41598-020-67460-1.
  27. Wei H., Xu Y., Chen Q. et al. Mesenchymal stem cell-derived exosomal miR-223 regulates neuronal cell apoptosis // Cell Death Dis. 2020. Vol. 11. N. 4. P. 290. DOI: 10.1038/s41419-020-2490-4.
  28. Kim H.J., Cho K.R., Jang H. et al. Intracerebroventricular injection of human umbilical cord blood mesenchymal stem cells in patients with Alzheimer’s disease dementia: A phase I clinical trial // Alzheimer’s Res. Ther. 2021. Vol. 13. N. 1. P. 154. DOI: 10.1186/s13195-021-00897-2.
  29. Kim D.Y., Choi S.H., Lee J.S. et al. Feasibility and Efficacy of Intra-Arterial Administration of Embryonic Stem Cell Derived-Mesenchymal Stem Cells in Animal Model of Alzheimer’s Disease // J. Alzheimer’s Dis. 2020. Vol. 76. N. 4. P. 1281–1296. DOI: 10.3233/JAD-200026.
  30. Blurton-Jones, M., Kitazawa M., Martinez-Coria H. et al. Neural stem cells improve cognition via BDNF in a transgenic model of Alzheimer disease // Proc. Natl. Acad.Sci. USA. 2009. Vol. 106. N. 32. P. 13594–13599. DOI: 10.1073/pnas.0901402106.
  31. Fouad G.I. Stem cells as a promising therapeutic approach for Alzheimer’s disease: A review // Bull. Natl.Res. Cent. 2019. Vol. 43. P. 52. DOI: 10.1186/s42269-019-0078-x.
  32. Moghadam F.H., Alaie H., Karbalaie K. et al. Transplantation of primed or unprimed mouse embryo­nic stem cell-derived neural precursor cells improves cognitive function in Alzheimerian rats // Differentiation. 2009. Vol. 78. N. 2–3. P. 59–68. DOI: 10.1016/j.diff.2009.06.005.
  33. Wang Q., Matsumoto Y., Shindo T. et al. Neural stem cells transplantation in cortex in a mouse model of Alzheimer’s disease // J. Med. Invest. 2006. Vol. 53. N. 1–2. P. 61–69. DOI: 10.2152/jmi.53.61.
  34. Yue W., Li Y., Zhang T. et al. ESC–Derived Basal Forebrain Cholinergic Neurons Ameliorate the Cognitive Symptoms Associated with Alzheimer’s Disease in Mouse Models // Stem Cell Rep. 2015. Vol. 5. N. 5. P. 776–790. DOI: 10.1016/j.stemcr.2015.09.010.
  35. Liu Y., Weick J.P., Liu H. et al. Medial ganglionic emi­nence-like cells derived from human embryonic stem cells correct learning and memory deficits // Nat. Biotechnol. 2013. Vol. 31. N. 5. P. 440–447. DOI: 10.1038/nbt.2565.
  36. Atkinson-Dell R., Mohamet L. Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Astroglia: A New Tool for Research towards the Treatment of Alzheimer’s Disease // Adv. Exp. Med. Biol. 2019. Vol. 1175. P. 383–405. DOI: 10.1007/978-981-13-9913-8_15.
  37. Butler Iii R.R., Kozlova A., Zhang H. et al. The Genetic Relevance of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Microglia to Alzheimer’s Disease and Major Neuropsychiatric Disorders // Mol. Neuropsychiatry. 2020. Vol. 5. Suppl. 1. P. 85–96. DOI: 10.1159/000501935.
  38. Zhang L., Xu M., Ren Q. et al. Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Neural Cells from Alzheimer’s Disease Patients Exhibited Different Susceptibility to Oxidative Stress // Stem Cells Dev. 2020. Vol. 29. N. 22. P. 1444–1456. DOI: 10.1089/scd.2020.0103.
  39. Kolagar T.A., Farzaneh M., Nikkar N., Khoshnam S.E. Human Pluripotent Stem Cells in Neurodegenerative Diseases: Potentials, Advances and Limitations // Curr. Stem Cell Res. Ther. 2020. Vol. 15. N. 2. P. 102–110. DOI: 10.2174/1574888X14666190823142911.
  40. Aboul-Soud M.A. M., Alzahrani A.J., Mahmoud A. Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) — Roles in Regenerative Therapies, Disease Modelling and Drug Screening // Cells. 2021. Vol. 10. N. 9. P. 2319. DOI: 10.3390/cells10092319.
  41. Armijo E., Edwards G., Flores A. et al. Induced Pluripo­tent Stem Cell-Derived Neural Precursors Improve Memory, Synaptic and Pathological Abnormalities in a Mouse Model of Alzheimer’s Disease // Cells. 2021. Vol. 10. N. 7. P. 1802. DOI: 10.3390/cells10071802.
  42. Games D., Adams D., Alessandrini R. et al. Alzheimer-type neuropathology in transgenic mice overexpressing V717Fbeta-amyloid precursor protein // Nature. 1995. Vol. 373. N. 6514. P. 523–527. DOI: 10.1038/373523a0.
  43. Fujiwara N., Shimizu J., Takai K. et al. Restoration of spatial memory dysfunction of human APP transgenic mice by transplantation of neuronal precursors derived from human iPS cells // Neurosci. Lett. 2013. Vol. 557. Part B. P. 129–134. DOI: 10.1016/j.neulet.2013.10.043.
  44. Oakley H., Cole S.L., Logan S. et al. Intraneuronal beta-Amyloid Aggregates, Neurodegeneration, and Neuron Loss in Transgenic Mice with Five Familial Alzheimer’s Disease Mutations: Potential Factors in Amyloid Plaque Formation // J. Neurosci. 2006. Vol. 26. N. 40. P. 10129–10140. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.1202-06.2006.
  45. Takamatsu K., Ikeda T., Haruta M. et al. Degradation of amyloid beta by human induced pluripotent stem cell-derived macrophages expressing Neprilysin-2 // Stem Cell Res. 2014. Vol. 13. N. 3. Part A. P. 442–453. DOI: 10.1016/j.scr.2014.10.001.
  46. Yue C., Jing N. The promise of stem cells in the therapy of Alzheimer’s disease // Transl. Neurodegener. 2015. Vol. 4. P. 8.
    DOI: 10.1186/s40035-015-0029-x.
  47. Zhang T., Ke W., Zhou X. et al. Human Neural Stem Cells Reinforce Hippocampal Synaptic Network and Rescue Cognitive Deficits in a Mouse Model of Alzheimer’s Dise­ase // Stem Cell Reports. 2019. Vol. 13. N. 6. P. 1022–1037. DOI: 10.1016/j.stemcr.2019.10.012.
  48. Nagahara A.H., Merrill D.A., Coppola G. et al. Neuroprotective effects of brain-derived neurotrophic factor in rodent and primate models of Alzheimer’s disease // Nat. Med. 2009. Vol. 15. N. 3. P. 331–337. DOI: 10.1038/nm.1912.
  49. Nagahara A.H., Mateling M., Kovacs I. et al. Early BDNF treatment ameliorates cell loss in the entorhinal cortex of APP transgenic mice // J. Neurosci. 2013. Vol. 33. N. 39. P. 15596–15602. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.5195-12.2013.
  50. Hemmer K., Zhang M., van Wüllen T. et al. Induced neural stem cells achieve long-term survival and functional integration in the adult mouse brain // Stem Cell Reports. 2014. Vol. 3. N. 3. P. 423–431. DOI: 10.1016/j.stemcr.2014.06.017.

Дата поступления рукописи в редакцию: 2023-12-01
Дата рецензии статьи: 2024-02-12
Дата принятия статьи к публикации: 2024-02-27

Вас может заинтересовать