Ассоциированные с полом различия реакций нейровоспаления в коре больших полушарий при манифестации болезни Альцгеймера в эксперименте

Оригинальная статья

УДК 616.894-053.8:615.3
DOI: 10.57034/2618723X-2024-02-05

Д.И. Поздняков1,2*,
кандидат фармацевтических наук, доцент, заведующий кафедрой фармакологии с курсом клинической фармакологии,
https://orcid.org/0000-0002-5595-8182
А.А. Вихорь1,
студентка V курса лечебного факультета,
https://orcid.org/0009-0006-1092-7901

1 Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации,
357532, Россия, Ставропольский край, г. Пятигорск, пр. Калинина, 11.
2 Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии — филиал ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии ФМБА России»,
357501, Россия, г. Пятигорск, пр. Кирова, д. 30.

* E-mail: [email protected]


Ключевые слова: нейровоспаление нейродегенеративные заболевания интерлейкины половые различия крысы

Благодарности

Работа выполнена без спонсорской поддержки.


Для цитирования:

Поздняков Д.И., Вихорь А.А. Ассоциированные с полом различия реакций нейровоспаления в коре больших полушарий при манифестации болезни Альцгеймера в эксперименте. Лабораторные животные для научных исследований. 2024; 2. https://doi.org/10.57034/2618723X-2024-02-05

Резюме

Болезнь Альцгеймера — одно из самых распространенных нейродегенеративных заболеваний, которое ежегодно диагностируется впервые у более 1,5 млн человек, а количество лиц с подтвержденным диагнозом составляет около 55 млн. Одной из особенностей патогенеза болезни Альцгеймера является развитие нейровоспаления, изучение особенностей течения которого позволит значительно улучшить процесс разработки новых лекарственных препаратов для коррекции данного заболевания. В данной работе оценены зависимые от пола различия процесса нейровоспаления при болезни Альцгеймера в эксперименте. Экспериментальную болезнь Альцгеймера моделировали на крысах Вистар (самцах и самках) путем введения агрегатов Aβ1–42 в гиппокамп животных. В процессе работы оценивали концентрацию фактора некроза опухоли-α, интерлейкинов 1β, 10, 6 и NOD-подобных рецепторов, которую определяли в коре больших полушарий методом твердофазного иммуноферментного анализа.

В ходе эксперимента было установлено, что у крыс как самцов, так и самок введение агрегатов Aβ1–42 индуцирует нейровоспалительную реакцию. При этом у крыс-самок процесс нейровоспаления протекал активнее, что выражалось в более высоком содержании интерлейкина-1β, интерлейкина-6 и NOD-подобных рецепторов по сравнению с самцами в 1,4 раза (p<0,05), 1,5 (p<0,05) и в 4 (p<0,05) соответственно. Стоит отметить, что концентрация фактора некроза опухоли-α и интерлейкина-10 статистически значимо не отличалась в группах самок и самцов с экспериментальной болезнью Альцгеймера. Таким образом, показано, что у крыс-самок Вистар реакции нейровоспаления протекают интенсивнее, чем у самцов, что можно использовать в ходе доклинических исследований новых лекарственных препаратов, предназначенных для лечения болезни Альцгеймера.

Введение

Нейровоспаление является одной из основных защитных реакций центральной нервной системы (ЦНС) и напрямую связано с патогенезом нейродегенеративных заболеваний [1]. Существует разделение процесса нейровоспаления на два типа в зависимости от длительности его течения: нейропротекторный и нейродегенеративный. Нейропротекторное нейровоспаление — это когда последствия от травмы носят кратковременный характер и длятся в течение короткого периода времени без тяжелых последствий со стороны нервной системы. При хроническом течении воспалительного процесса с постоянным воздействием на ЦНС нейровоспаление приобретает нейродегенеративный характер [2]. Согласно данным, представленным R. Dhapola и соавт. и К. Shi и соавт. [3, 4], одним из основных нейродегенеративных заболеваний считается болезнь Альцгеймера (БА), от которой страдает около 55 млн человек во всем мире. При этом одним из ведущих патофизиологических процессов в развитии БА является нейровоспаление, приводящее к активации ряда факторов, которые будут способствовать развитию дегенерации в коре больших полушарий головного мозга [5]. Среди данных факторов выделяют процесс активации глиальных клеток, который приводит к высвобождению ряда провоспалительных молекул: фактор некроза опухоли-⁠α (ФНО-⁠α), интерлейкины (ИЛ) 1β и 6 [6]. Также выделяют взаимосвязь этих процессов (посредством активации NOD-⁠подобных рецепторов — NDLR) с образованием нейрофибриллярных клубков тау-⁠белка и внеклеточным отложением бета-⁠амилоида (Aβ) — главных особенностей течения БА [7, 8]. Так, NDLR-⁠зависимое повышение уровня ИЛ-⁠1β будет катализировать процесс образования других цитокинов, таких как ИЛ-⁠6, которые в последствии будут активировать CDK5, индуцируя гиперфосфорилирование тау и формирование нейрофибриллярных включений [9, 10].

В связи с высокой патогенетической значимостью реакций нейровоспаления изучению данного процесса посвящено обширное количество клинических исследований. Например, А. Ng и соавт. [11] в метаанализе, обобщающем 34 клинических исследования, продемонстрировали, что имеется значимая связь между развитием нейровоспаления при БА и депрессией. В ходе доклинических исследований БА нейровоспаление и ключевые молекулы, которые опосредуют инициацию и поддержание данного процесса, рассматриваются как одни из наиболее перспективных фармакотерапевтических мишеней [12].

В то же время изучению влияния пола экспериментальных животных на течение нейровоспалительной реакции и БА в общем отводится намного меньшая роль. По данным R. Zakaria и соавт. [13], в подавляющем большинстве случаев, в ходе доклинических исследований при моделировании БА используются крысы-⁠самцы, хотя указывается, что на крысах-⁠самках возможно воспроизведение патогенетического фенотипа заболевания, наиболее близкого к таковому в клинической практике. Однако стоит отметить, что в некоторых исследованиях установлены половые различия отдельных звеньев патогенеза БА. Например, Р. Babaei и соавт. [14] показали, что реакции окислительного стресса в ткани головного мозга у крыс с БА протекают интенсивнее у самок, о чем свидетельствовал пониженный по отношению к крысам-⁠самцам уровень восстановленного глутатиона.

R. Biasibetti и соавт. [15] продемонстрировали, что при моделировании БА путем введения стрептозотицина в гиппокамп животных имеются существенные половые отличия в формировании холинергических нарушений, энергодефицита и окислительного стресса. Таким образом, отдельные патогенетические механизмы развития БА изучаются в контексте зависимых от пола изменений, но в то же время нейровоспалению уделяется не такое пристальное внимание, что актуализирует оценку данного патофизиологического механизма течения БА с позиции пол-⁠ассоциированных отличий.

Цель исследования — проведение исследования, направленное на выявление возможных половых различий реакций нейровоспаления в коре больших полушарий у крыс с болезнью Альцгеймера.

Материал и методы

Экспериментальная работа проводилась на половозрелых крысах самцах и самках Вистар массой тела 210–230 г (n=40), полученных из питомника лабораторных животных «Рапполово» (д. Рапполово, Ленинградская обл.). Содержание животных соответствовало положениям Директивы ЕС 2010/⁠631. Животные находились в помещениях лаборатории живых систем Пятигорского медико-⁠фармацевтического института (ПМФИ) при контролируемых условиях окружающей среды: нормальном атмосферном давлении, температуре воздуха 22–24 °С, влажности воздуха 55–75% и 12-⁠часовом цикле день/⁠ночь с сохранением нормальных для данного вида циркадных ритмов. Доступ животных к воде и полнорационному корму не ограничивали. Все манипуляции, проводимые с экспериментальными животными, соответствовали международным нормам экспериментальной этики [16]. Оперативные процедуры выполнены под хлоралгидратной анестезией (хлоралгидрат 350 мг/⁠кг интраперитонеально). Дизайн исследования был одобрен локальным этическим комитетом ПМФИ (протокол № 8 от 07.07.23). За 14 дней до начала эксперимента животных помещали в карантинном помещении, затем их разделили на 4 группы по 10 особей: 1-⁠я группа — ложнооперированные самцы (ЛО ♂); 2-⁠я группа — ложнооперированные самки (ЛО ♀); 3-⁠я группа — самцы с моделью патологии (НК ♂); 4-⁠я группа — самки с моделью патологии (НК ♀).

Количество животных в группе рассчитывали по формуле:

n=(t0,05×Sd)2/⁠d2,

где: Sd — дисперсия межгрупповых различий; d — средняя разница, когда ожидаемая величина является значимой; t0,05 — дисперсия межгрупповых различий при р=0,05.

Принимая, что n>30, t=2, Sd=3 и d=2, рассчитанное значение n составляет не менее 9 особей в одной группе [17].

Животным 3-⁠й и 4-⁠й групп проводилось моделирование БА путем внутригиппокампальной инъекции (в СА1-⁠часть гиппокампа. Стереотаксические координаты: переднезадняя 3,8 мм, медиально-⁠латеральная 2 мм, дорсально-⁠вентральная 2,6 мм от брегмы) агрегатов Aβ1–42. Агрегаты получали ex tempore путем растворения фрагментов Aβ1–42 (Sigma-⁠Aldrich, Германия) в смеси диметилсульфоксид/⁠вода очищенная (1/⁠9) при непрерывном перемешивании. Животных анестезировали хлоралгидратом, фиксировали в стереотаксической установке и отмечали место, необходимое для выполнения трепанации. Далее крыс извлекали из установки, скальпировали и бором проделывали трепанационное отверстие (при периодическом охлаждении 0,9% раствором натрия хлорида) согласно отмеченным ранее координатам. Агрегаты Aβ1–42 вводили в конечной концентрации 1 ммоль/⁠л в объеме 2 мкл, используя шприц Гамильтона 10 мкл. После проведения процедуры моделирования патологии животных оставляли на 21 день [18]. Ежедневно животных осматривали на предмет наличия отклонений локомоторной активности, сенсорного восприятия, состояния кожных покровов. Смертности в процессе эксперимента отмечено не было. К ложнооперированным группам применялись манипуляции, аналогичные таковым при моделировании БА, за исключением введения агрегатов Aβ1–42.

На 22-⁠й день проведения исследовательской работы животных подвергали эвтаназии методом декапитации с последующим извлечением головного мозга, который помещали на ледяную баню температурой не выше 4 °С. После выделяли кору больших полушарий путем иссечения скальпелем по средней борозде и непосредственно отделяли нужный биоматериал. Далее путем механического гомогенизирования в холодном буферном растворе, состоящем из 1 мM этиленгликольтетраацетата, 215 мM маннитола, 75 мM глюкозы, 0,1% бычь­его сывороточного альбумина, 20 мM HEPES; рН 7,2 (соотношение масса ткани/⁠объем буферного раствора составляло 1:7), получали гомогенат, который впоследствии центрифугировали при 10 000 g в течение 15 мин. В выделенном супернатанте методом иммуноферментного анализа определяли изменение реакций нейровоспаления путем оценки концентрации основных биомаркеров данного процесса: ИЛ 1, 6, 10, ФНО-⁠α и NDLR. Реактивы для проведения процедуры ИФА являлись видоспецифичными (Cloud Clone corp., КНР). В ходе анализа применяли систему микропланшетного ридера Infinite F50 (Tecan, Австрия).

Все результаты, полученные в ходе экспериментальной работы, обрабатывали методами вариационной статистики с использованием пакета прикладных программ «StatPlus 7.0» (AnalystSoft Inc., США). Исходные данные были проверены на нормальность распределения согласно критерию Шапиро—Уилка. Для сравнения групп средних применяли параметрические методы ANOVA с посттестом Ньюмена—Кейлса и непараметрические методы статического анализа — тест Крускалла—Уоллиса с постпарным сравнением в тесте Данна. Различия считали статистически значимыми при p<0,05.

Результаты и обсуждение

По результатам анализа установлено, что в группе самок с моделью патологии БА величина уровня NDLR превосходила показатели контрольной группы животных в 44,7 раза (p<0,05). В группах самцов наблюдалась схожая тенденция к повышению уровня NDLR, увеличение концентрации рецепторов в сравнении с контрольной группой составило 10,6 раза (p<0,05), что было в 4 раза (p<0,05) меньше, чем у самок крыс с БА (рис. 1).

В ходе процедуры оценки концентрации ИЛ-⁠1β было определено, что в группе самок с БА отмечено повышение содержания данного цитокина в 12,5 раза (p<0,05) в сравнении с группой ложнооперированных крыс-⁠самок. По данным, полученным в процессе определения концентрации ИЛ-⁠1β в группах самцов, была отмечена тенденция к повышению уровня данного цитокина, который существенно превосходил показатели ложнооперированной группы крыс-⁠самцов в 4,8 раза (p<0,05). При этом показатели у крыс-⁠самцов были в 1,4 раза (p<0,05) ниже, чем в группе крыс-⁠самок с БА (рис. 2).

В результате исследования установлено, что уровень ИЛ-⁠6 в группе самок с моделью патологии был выше в 7,5 раза (p<0,05), чем у ложнооперированной группы. Содержание ИЛ-⁠6 в группе самцов с экспериментальной БА было выше, нежели у ложнооперированных животных, в 4,9 раза (p<0,05). В то же время концентрация ИЛ-⁠6 у крыс-⁠самок с БА была в 1,5 раза (p<0,05) выше, чем у крыс-⁠самцов с БА (рис. 3).

Уровень ИЛ-⁠10 (рис. 4) в группах крыс (♀, ♂) с моделью патологии снижался в равной зависимости по отношению к соответствующим показателям ложнооперированных крыс на 63,2% (p<0,05) и на 56,4% (p<0,05).

При проведении сравнительного анализа данных определения концентрации ФНО-⁠α установлено, что в группах животных (♀, ♂) с моделью патологии в равной зависимости повышался уровень данного цитокина, который превышал показатели ложнооперированных животных в 2,8 раза (p<0,05) и в 2,3 раза (p<0,05) соответственно (рис. 5).

На протяжении последних лет идет активное изучение нейровоспаления как потенциального фактора в развитии нейродегенерации. Так, в 2016 г. V. Calsolaro и соавт. [19] провели ряд исследований с применением нейровизуализации и изучением биопсии головного мозга пациентов с БА, в которых показали существенную роль нейровоспаления в течении БА. Помимо этого, особое внимание направлено на исследование мультибелкового комплекса, известного как NDLR-⁠связанная инфламмасома. NDLR активируется как ответ на повышение концентрации агрегатов Aβ, что впоследствии будет приводить к увеличению продукции цитокинов и активации сопряженных с ними патофизиологических механизмов развития БА, например, каспаза-⁠зависимых реакций апоптоза [20, 21]. Исследования показывают, что NDLR-⁠связанная инфламмасома и вызванное ей нейровоспаление приводят к гибели нейронов и снижению когнитивных функций [19]. В то же время NDLR подвержены значительному полиморфизму (зависимому от пола), что делает данный мультибелковый комплекс краеугольным камнем пол-⁠ассоциированных реакций воспаления. Как отмечают S. Green-⁠Fulgham и соавт. [22], при наличии патологического процесса в ЦНС у крыс-⁠самок наблюдается повышенная экспрессия NDLR, что приводит к гиперцитокинемии и неконтролируемой нейровоспалительной реакции. В данном исследовании показано, что при моделировании БА у самок крыс по сравнению с самцами концентрация NDLR была выше в 4 раза (p<0,05), что, вероятно, объясняет повышенные уровни цитокинов в ткани головного мозга у самок крыс по отношению к самцам. Также основываясь на полученных результатах, можно оптимизировать подход к доклинической оценке средств нейропротекторного действия, что позволит увеличить их трансляционный успех. Как отмечают N. Zhang и соавт. [23], успешное применение нейропротекторов в клинической практике весьма ограничено, что не в последнюю очередь связано с выбором релевантной экспериментальной модели на этапе доклинических испытаний. В связи с этим исследованные пол-⁠зависимые отличия реакций нейровоспаления у крыс с болезнью Альцгеймера могут быть использованы при изучении как фундаментальных особенностей течения нейродегенеративных процессов, так и при доклинической оценке новых нейропротекторных соединений.

Заключение

На основании полученных данных можно говорить, что у крыс-⁠самок процесс нейровоспаления в коре больших полушарий в условиях экспериментальной болезни Альцгеймера проходил намного интенсивнее за счет повышенной экспрессии NDLR (в 4 раза; p<0,05) и соответствующего увеличения уровня цитокинов интерлейкина-⁠1β (в 1,4 раза; p<0,05) и интерлейкина-⁠6 (в 1,5 раза; p<0,05). Результаты данного исследования позволят детальнее подходить к выбору пола экспериментальных животных при моделировании нейродегенеративных заболеваний, в частности болезни Альцгеймера, что в свою очередь позволит улучшить подходы к доклиническому изучению нейропротекторов.

Сведения о конфликте интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Вклад авторов

Д.И. Поздняков — разработка концепции исследования, проведение эксперимента, подготовка рукописи.
А.А. Вихорь — проведение эксперимента, статистическая обработка данных, подготовка рукописи.

  1. Директива 2010/63/EU Европейского парламента и Совета Европейского союза по охране животных, используемых в научных целях / пер. с англ. Под ред. М.С. Красильщиковой, И.В. Белозерцевой. Санкт-Петербург, 2012. 48 с. [Direktiva 2010/63/EU Yevropeyskogo Parlamenta i Soveta Yevropeyskogo Soyuza po okhrane zhivotnykh, ispol’zuyemykh v nauchnykh tselyakh / transl. from English. Ed. M.S. Krasilshchikova, I.V. Belozertseva. St. Petersburg, 2012. 48 p. (In Russ.)].

Список источников

  1. Rauf A., Badoni H., Abu-Izneid T. et al. Neuroinflammatory Markers: Key Indicators in the Pathology of Neurodegenerative Diseases // Molecules. 2022. Vol. 27. N. 17. P. 3194. DOI: 10.3390/molecules27103194.
  2. Shastri A., Bonifati D.M., Kishore U. Innate immunity and neuroinflammation // Mediators Inflamm. 2013. Vol. 2013. P. 342931. DOI: 10.1155/2013/342931.
  3. Dhapola R., Hota S.S., Sarma P. et al. Recent advances in molecular pathways and therapeutic implications targeting neuroinflammation for Alzheimer’s disease // Inflammopharmacology. 2021. Vol. 29. N. 6. P. 1669–1681. DOI: 10.1007/10787-021-00889-6.
  4. Shi K., Yu Y., Li Z. et al. Causal relationship between dietary salt intake and dementia risk: Mendelian randomization study // Genes Nutr. 2024. Vol. 29. N. 1. P. 6. DOI: 10.1186/s12263-024-00741-w.
  5. Scheltens P., De Strooper B., Kivipelto M. et al. Alzheimer’s disease // Lancet. 2021 Vol. 397. N. 10284. P. 1577–1590. DOI: 10.1016/S0140-6736(20)32205-4.
  6. Chen L., Deng H., Cui H. et al. Inflammatory respon­ses and inflammation-associated diseases in organs // Oncotarget. 2017. Vol. 9. N. 6. P. 7204–7218. DOI: 10.18632/oncotarget.23208.
  7. Martin S.C., Joyce K.K., Harper K.M. et al. Evalua­ting Fatty Acid Amide Hydrolase as a Suitable Target for Sleep Promotion in a Transgenic TauP301S Mouse Model of Neurodegeneration // Pharmaceuticals (Basel). 2024. Vol. 17. N. 3. P. 319. DOI: 10.3390/ph17030319.
  8. Pang Y., Lin W., Zhan L. et al. Inhibiting Autophagy Pathway of PI3K/AKT/mTOR Promotes Apoptosis in SK-N-SH Cell Model of Alzheimer’s Di­sease // J. Healthc. Eng. 2022. Vol. 8. P. 6069682. DOI: 10.1155/2022/6069682.
  9. Thakur S., Dhapola R., Sarma P. et al. Neuroinflammation in Alzheimer’s Disease: Current Progress in Mole­cular Signaling and Therapeutics // Inflammation. 2023. Vol. 46. N. 1. P. 1–17. DOI: 10.1007/s10753-022-01721-1.
  10. Dhapola R., Sarma P., Medhi B. et al. Recent Advances in Molecular Pathways and Therapeutic Implications Targeting Mitochondrial Dysfunction for Alzheimer’s Di­sease // Mol. Neurobiol. 2022. Vol. 59. N. 1. P. 535–555. DOI: 10.1007/s12035-021-02612-6.
  11. Ng A., Tam W.W., Zhang M.W. et al. IL-1β, IL-6, TNF-α and CRP in Elderly Patients with Depression or Alzheimer’s disease: Systematic Review and Meta-­Analysis // Sci. Rep. 2018. Vol. 8. N. 1. P. 12050. DOI: 10.1038/s41598-018-30487-6.
  12. Cohen J., Mathew A., Dourvetakis K.D. et al. Recent Research Trends in Neuroinflammatory and Neurodege­nerative Disorders // Cells. 2024. Vol. 13. N. 1. P. 511. DOI: 10.3390/cells13060511.
  13. Zakaria R., Wan Yaacob W.M., Othman Z. et al. Lipopolysaccharide-induced memory impairment in rats: a mo­del of Alzheimer’s disease // Physiol. Res. 2017. Vol. 46. N. 4. P. 553–565. DOI: 10.33549/physiolres.933480.
  14. Babaei P., Eyvani K., Kouhestani S. Sex-Independent Cognition Improvement in Response to Kaempferol in the Model of Sporadic Alzheimer’s Disease // Neurochem. Res. 2021. Vol. 46. N. 6. P. 1480–1486. DOI: 10.1007/s11064-021-03289-y.
  15. Biasibetti R., Almeida Dos Santos J.P., Rodrigues L. et al. Hippocampal changes in STZ-model of Alzheimer’s di­sease are dependent on sex // Behav. Brain Res. 2017. Vol. 316. P. 205–214. DOI: 10.1016/j.bbr.2016.08.057.
  16. Percie du Sert N., Hurst V., Ahluwalia A. et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research // PLoS Biol. 2020. Vol. 18. N. 7. P. e3000410.
  17. Mead R, Gilmour SG, Mead A. Statistical principles for the design of experiments: applications to real experiments. Cambridge, UK: Cambridge University Press, 2012.
  18. Kim H.Y., Lee D.K., Chung B.R. et al. Intracerebroventricular Injection of Amyloid-β Peptides in Normal Mice to Acutely Induce Alzheimer-like Cognitive Deficits // J. Vis. Exp. 2016. Vol. 106. P. 53308. DOI: 10.3791/53308.
  19. Calsolaro V., Edison P. Neuroinflammation in Alzheimer’s disease: Current evidence and future directions // Alzheimers Dement. 2016. Vol. 12. N. 6. P. 719–732. DOI: 10.1016/j.jalz.2016.02.010.
  20. Yap J.K.Y., Pickard B.S., Chan E.W.L. et al. The Role of Neuronal NLRP1 Inflammasome in Alzheimer’s Di­sease: Bringing Neurons into the Neuroinflammation Game // Mol. Neurobiol. 2019. Vol. 56. N. 11. P. 7741–7753. DOI: 10.1007/s12035-019-1638-7.
  21. Franchi L., Eigenbrod T., Muñoz-Planlo R. et al. The inflammasome: a caspase-1-activation platform that regulates immune responses and disease pathogenesis // Nat. Immunol. 2009. Vol. 10. N. 3. P. 241–247. DOI: 10.1038/ni.1703.
  22. Green-Fulgham S.M., Ball J.B., Kwilasz A.J. et al. Interleukin-1beta and inflammasome expression in spinal cord following chronic constriction injury in male and female rats // Brain Behav. Immun. 2024. Vol. 115. P. 157–168. DOI: 10.1016/j.bbi.2023.10.004.
  23. Zhang N., Nao J., Dong X. Neuroprotective Mechanisms of Salidroside in Alzheimer’s Disease: A Systematic Review and Meta-analysis of Preclinical Studies // J. Agric. Food Chem. 2023. Vol. 71. N. 46. Р. 17 597–17 614. DOI: 10.1021/acs.jafc.3c06672.

Дата поступления рукописи в редакцию: 2024-04-05
Дата рецензии статьи: 2024-05-18
Дата принятия статьи к публикации: 2024-05-30

Вас может заинтересовать